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芩百清肺浓缩丸对感染肺炎支原体小鼠TRPA1、P物质的影响

  2022-07-08    87  上传者:管理员

摘要:目的:研究芩百清肺浓缩丸治疗小鼠感染肺炎支原体后咳嗽的作用机制。方法:实验分为正常对照组、模型组、阳对组(阿奇霉素0.03 g/kg)和芩百组(2.34 g/kg),通过BALB/c小鼠鼻腔滴入20μL106CCU肺炎支原体造模,各组小鼠灌胃给予相应药物7 d。引咳实验观察各组小鼠咳嗽情况,HE染色观察各组小鼠肺组织变化,免疫组化观察各组小鼠肺组织TRPA1(瞬间受体电位离子通道)蛋白表达,RT-PCR检测小鼠肺组织TRPA1及P物质m RNA表达。结果:与模型组相比,芩百组和阳对组均能降低小鼠咳嗽次数,HE染色显示芩百组小鼠肺组织支气管黏膜水肿减轻,免疫组化结果显示芩百组小鼠肺组织TRPA1蛋白表达减弱(P<0.05),RT-PCR结果显示芩百组小鼠肺组织TRPA1和P物质m RNA表达减少(P<0.05)。结论:芩百清肺浓缩丸通过降低咳嗽蛋白TRPA1和气道神经源性炎症介质P物质的表达治疗肺炎支原体感染后咳嗽。

  • 关键词:
  • TRPA1
  • 咳嗽
  • 病理学
  • 肺炎支原体
  • 芩百清肺浓缩丸

肺炎支原体引发的咳嗽可持续数月,刺激气道上皮产生慢性炎症[1],此时咳嗽蛋白TRPA1被激活,释放气道神经源性炎症介质P物质[2]。现阶段治疗主要以大环内酯类抗生素类为主,但是大环内酯类抗生素以治疗肺炎支原体感染为主,因此通常需要联合止咳药治疗。并且研究发现中国和日本过度使用大环内酯类抗生素,85%以上的肺炎支原体肺炎儿科病例对大环内酯类抗生素具有耐药性[3]。

芩百清肺浓缩丸由黄芩、百部等6味中药组成,具有清热解毒、润肺止咳之功效[4,5]。前期实验表明,芩百清肺浓缩丸可减少肺炎支原体感染的人肺癌细胞A549的增殖[6],抑制肺部慢性炎症合并肺炎支原体肺炎小鼠纤维素沉积[7],并且还可以抑制支原体黏附蛋白P1和P30表达[8]。本研究观察了芩百清肺丸对支原体感染小鼠的止咳作用,应用免疫组化和RT-PCR实验观察芩百清肺浓缩丸对感染肺炎支原体小鼠咳嗽蛋白TRPA1、P物质因子的影响。报道如下。


1、实验材料


1.1实验动物

40只SPF级6周龄BALB/c小鼠,雌雄各半,体质量20~22 g,购买于哈尔滨医科大学实验动物学部,动物合格证号:SCXK(黑) 2019-001,饲养于GLP实验室。严格按照《黑龙江省实验动物护理和使用指南》的建议进行本研究。该方案经黑龙江省中医科学院动物护理和使用委员会批准(许可编号:[2011]93号)。

1.2实验药品及试剂

芩百清肺浓缩丸:哈尔滨天合力制药有限公司,批号:200101,用生理盐水配成0.11 g/m L溶液;阿奇霉素分散片:石药集团欧意药业有限公司,批号:274180404,用生理盐水配成1.5 g/L溶液。一抗TRPA1:Proteintech公司;P物质:美国Abcam公司;兔超敏免疫组化试剂盒:北京中山金桥公司;RT-PCR试剂盒:Promega公司。

1.3实验仪器

恒温培养箱:北京市六一仪器厂公司;BX41-DP72生物显微镜:Olympus;超纯水制备仪:广州吉迪仪器有限公司;ST-16R型低温高速离心机:美国Thermo Fisher Scientific公司;BP211D型电子天平:Sartorius公司;DP73显微镜成像系统:O-lympus;多功能酶标仪:瑞士TECAN公司;Line Gene9600 Real-Time PCR仪:中国博日公司。


2、实验方法


2.1肺炎支原体的培养

肺炎支原体:American Type Culture Collection,批号:ATCC15531,于含20%胎牛血清PPLO培养基培养,每隔7 d传代1次,感染小鼠造模的菌种选用传代的第3代。

2.2动物分组、造模和给药

小鼠饲养3~5 d适应环境后,将40只小鼠随机分成4组,每组10只,分别为正常组、模型组、阳性对照组和芩百清肺浓缩丸组(芩百组)。除正常组外,其余各组小鼠鼻腔滴入20μL106CCU肺炎支原体培养液造模,连续3 d。阳对组予阿奇霉素(0.03 g/kg)灌胃,芩百组予芩百清肺浓缩丸(2.34 g/kg)灌胃,每日1次,正常组、模型组予等体积生理盐水,连续灌胃7 d。

2.3观察指标

2.3.1引咳实验

给药7 d后,将各组小鼠置于倒置的500 m L烧杯内,吸取0.5 m L氨水,滴加在棉球上,迅速扣严烧杯,观察和记录小鼠3 min内咳嗽次数。

2.3.2肺组织病理学变化

引咳实验结束后脱颈椎处死小鼠,取左肺,置于10%福尔马林24 h,石蜡包埋切片,于65℃烘箱烘烤1 h,依次用二甲苯脱蜡3次,每次10 min,无水乙醇3次,每次2 min,95%乙醇Ⅰ2~3 min,95%乙醇Ⅱ2~3 min,90%乙醇Ⅱ2 min,80%乙醇2 min,70%乙醇2 min,再放入蒸馏水5 min,苏木素染色液3~5 min,自来水冲洗5 min,置于1%盐酸乙醇30 s,自来水冲洗5 min,置于伊红染色液3~5 min,酒精梯度脱水、二甲苯透明,中性树脂封片。

2.3.3免疫组化法检测TRPA1蛋白表达

将小鼠肺组织石蜡切片于65℃烘箱烘1 h后,经过脱蜡后,放置于煮沸的0.01 mol/L枸橼酸缓冲液中,煮沸10 min,置冷水冷却后,将配制好的PBS缓冲液清洗3次,H2O2去离子水孵育10 min,PBS缓冲液冲洗3次,滴加一抗(TRPA1 1∶300)孵育,置于4℃冰箱过夜。第2天,根据免疫组化试剂盒说明书,滴加反应增强液孵育,再用PBS缓冲液冲洗3次,滴加二抗,孵育1 h,采用DAB显色8 min后,复染,封片。根据IHC评分标准进行评分统计,IHC评分标准:每张切片选取3个视野,从着色深浅程度及其面积进行评分。着色深浅程度:浅色计1分,棕黄色计2分,棕褐色计3分;着色细胞面积:在25%以下计1分,在25%~49%计2分,在50%以上计3分。以二者乘积为综合得分统计。

2.3.4 RT-PCR法检测肺组织TRPA1mRNA和P物质表达

取小鼠右肺组织50 mg置于研磨管中,加入1 m L Trizol溶液和2个钢珠,低温匀浆120 s,室温静置30 min,直至溶液变澄清。加入0.2 m L氯仿,振荡15 s并静置5 min,置于4℃离心机中以12 000 r/min的转速离心15 min,使用移液枪吸出上清液转移至另一离心管中,加入等体积的异丙醇,混匀管中液体,室温静置10 min后离心取上清,加入75%乙醇后离心舍弃上清,室温静置干燥15 min,加入20μLDEPC水,置于65℃水浴锅中促溶10~15 min。使用酶标仪测定各组m RNA浓度,根据m RNA浓度测定结果,用无核酸水稀释为100 mg/L,将PCR反应体系加样至8连排中,PCR反应体系的配制为:Go Taq q PCR Master Mix,2X:10μL;Supplement MgCl2,25 mmol/L:1.5μL;GoScript RT Mix for 1-step RT-Qpcr,50X:0.4μL;Supplement CXR Reference Dye,30 mmol/L:0.4μL;Nuclease-Free water:4.7μL;Forward Primer,10X:1μL;Reverse Primer,10X:1μL;RNA Template:1μL,以200 r/min转速离心1 min,使其充分混匀,取出后放置于PCR扩增仪中循环扩增。

反应扩增条件为:37℃(900 s),循环1次;95℃(600 s),循环1次;95℃(10 s),循环40次;60℃(30 s),循环40次;72℃(30 s),循环40次。溶解曲线:起始温度为72℃.恒温10 s;采样模式:单次,台阶温度:0.5℃。反应结束后查看荧光定量PCR的扩增曲线和溶解曲线,输出Ct值,计算2-ΔΔCt值,以模型组为参比,设定表达量为1,计算其余组相对模型组数值,进行比较。

引物基因序列如下:TRPA1正向5’-GOGGTT-GGGGACATTGCTGAG-3’,TRPA1反向5’-TG-GATACACGATGGTGGACCTCTG-3’;P物质正向5’-TTGGTCCGACTGGTCCGACAG-3’,P物质反向5’-GAACTGCTGAGGCTTGGGTCTTC-3’;β-actin正向5’-GACGGCCAGGTCATCACTAT-3’,β-actin反向5’-AGGAAGGCTGGAAAAGAGCC-3’。

2.4统计学分析

本实验采用SPSS25.0软件进行统计学分析,数据用表示,用独立样本t检验比较,P


3、结果


3.1各组小鼠引咳实验结果

见表1。

表1各组小鼠氨水引咳实验结果

3.2各组小鼠肺组织HE染色结果

正常组小鼠肺组织结构完整,无感染现象。模型组小鼠肺组织可见大量炎细胞浸润,肺组织结构不完整,支气管黏膜水肿,间隙变窄。与模型组相比,芩百组和阳对组病变不同程度地减轻,芩百组支气管水肿减轻,有少量炎细胞浸润。见图1。

3.2各组小鼠肺组织HE染色结果

正常组小鼠肺组织结构完整,无感染现象。模型组小鼠肺组织可见大量炎细胞浸润,肺组织结构不完整,支气管黏膜水肿,间隙变窄。与模型组相比,芩百组和阳对组病变不同程度地减轻,芩百组支气管水肿减轻,有少量炎细胞浸润。见图1。

图2各组小鼠肺组织TRPA1蛋白表达的免疫组化检测结果(×40)

3.4各组小鼠肺组织TRPA1mRNA和P物质m RNA表达的RT-PCR检测结果

见表3。

表3各组小鼠肺组织TRPA1、P物质m RNA表达的比较


4、讨论


肺炎支原体主要通过空气飞沫传播进入人体呼吸道,使呼吸道黏膜上皮细胞受到破坏,上皮细胞纤毛活动变慢,甚至完全脱落,同时支气管壁肥厚,管腔变小,痰不易排出,进而引起剧烈咳嗽[9]。咳嗽是指迷走神经传入离子通道并被激活的一种反射,这些离子通道其中包括阳离子选择性通道的瞬时受体电位(TRP)家族[10]。TRP家族作为气道感觉神经元上咳嗽感受器,在咳嗽发病中发挥重要作用。TRPA1是一种电位依赖的Ca2+可渗透阳离子通道,其氨基端有14个蛋白重复,属于TRP家族较大的分支之一。主要激活模式是通过对N-末端半胱氨酸或赖氨酸的共价修饰,当TRPA1被激活活化后,释放更多的神经肽和气道神经源性炎症介质P物质,从而诱发咳嗽[11,12]。在临床试验和豚鼠模型中,TRPA1已被确认为促咳受体,可以选择此受体作为拮抗阻断剂[13,14],为潜在的镇咳药物的研究开辟了一个全新的领域。

芩百清肺浓缩丸是以经方止嗽散为基础方,在临床研究基础上经加减而成的治疗肺炎支原体肺炎的有效方剂,本实验观察了芩百清肺浓缩丸对感染肺炎支原体小鼠咳嗽蛋白TRPA1及气道神经源性炎症介质P物质的影响。结果可见芩百组能够减少咳嗽次数,改善小鼠肺组织病理变化,降低咳嗽蛋白TRPA1蛋白表达,下调咳嗽蛋白TRPA1及气道神经源性炎症介质P物质m RNA表达。表明芩百清肺浓缩丸可有效缓解支原体肺炎的咳嗽症状,减少咳嗽因子TRPA1及气道神经源性炎症介质P物质的表达是其部分作用机制。


参考文献:

[1]于利,罗函渝,张伟忠,等. 130例肺炎支原体感染所致儿童慢性咳嗽的治疗研究[J].国际医药卫生导报,2013,19(10):1436-1439.

[2]杨建林,武阳,丁书茂,等。TRPA1介导哮喘和咳嗽机制的研究进展[J].医学研究杂志,2011,40(10):134-137.

[4]姚琳,张俊威,王博,等。百清肺浓缩丸对肺炎支原体感染大鼠肺组织中TGF-β和SP-A表达的影响[J].中国药理学通报,2016,32(4):564-569.

[5]杨志敏,蒙艳丽,王慧慧,等.百清肺浓缩丸对肺炎支原体感染的影响[J].中成药,2020,42(5):1150-1155.

[7]蒙艳丽,王晓溪,徐慧星,等.百清肺浓缩丸对小鼠肺部慢性炎症合并肺炎支原体肺炎的疗效观察[J].中南药学, 2019,17(11):1805-1808.

[9]冯金燕,陈志敏.肺炎支原体感染现状及其与哮喘的关系[J].国际儿科学杂志,2010(1):.7-19.

[12]王颖,史利卿,马建岭,等. TRP通道在慢性咳嗽中的作用机制探讨[J].临床肺科杂志,2019,24(10):1910-1913.


文章来源:王磊,蒙艳丽,王博,王晓溪,王欣,梁明川,王伟明.芩百清肺浓缩丸对感染肺炎支原体小鼠TRPA1、P物质的影响[J].中国中医药科技,2022,29(04):541-544.

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